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WorksheetsDIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO
Total questions: 50
Worksheet time: 25mins
Según el documento, cuando no se identifican parásitos en un examen coproparasitológico, el resultado debe informarse como:
Negativo para parásitos
Normal
No se observaron parásitos
Ausencia de formas parasitarias
Dentro de límites normales
La técnica de Kato-Katz es considerada por la OMS como el método de elección para:
El diagnóstico de protozoarios intestinales
Encuestas epidemiológicas de geohelmintos
La identificación de trofozoítos móviles
El diagnóstico de Strongyloides stercoralis
La detección de antígenos parasitarios
Según el documento, ¿cuál de estos fijadores NO es adecuado para la conservación de trofozoítos?
PAF (Fenol-Alcohol-Formol)
PVA (Alcohol Polivinílico)
MIF (Merthiolate-Yodo-Formol)
Formulina al 10%
Todos los anteriores son adecuados
Esta técnica se basa en:
La flotación de quistes en soluciones de alta densidad
La sedimentación de huevos por centrifugación
La migración de larvas hacia agua templada por termo-hidrotropismo
La concentración por filtración de muestras líquidas
La tinción diferencial de estructuras parasitarias
El documento señala que para el diagnóstico de Chagas agudo y congénito, el método de elección es:
La serología por ELISA
El xenodiagnóstico
El micrométodo en tubo capilar
La PCR en sangre periférica
La inmunofluorescencia indirecta
Según el documento, las muestras de heces disentéricas deben examinarse antes de 30 minutos para:
Evitar la destrucción de huevos de helmintos
Observar trofozoítos móviles de protozoarios
Prevenir la proliferación bacteriana
Realizar técnicas de concentración adecuadas
Evitar cambios en la consistencia de la muestra
La técnica de Graham se utiliza específicamente para el diagnóstico de:
Taenia saginata
Enterobius vermicularis
Strongyloides stercoralis
Trichuris trichiura
Ascaris lumbricoides
Según el documento, la ventaja principal de la gota gruesa sobre el extendido sanguíneo es:
Permitir la identificación específica del parásito
Mejorar la sensibilidad al examinar mayor volumen de sangre
Mostrar mejor la morfología de los parásitos
Ser más rápida de realizar y leer
No requerir coloración para su examen
El documento establece que para los exámenes serológicos es más adecuado:
Utilizar una sola técnica de alta sensibilidad
Emitir resultados utilizando al menos 2 técnicas distintas
Realizarlos sólo cuando el examen directo es negativo
Evitar su uso en enfermedades crónicas
Informar siempre el título sin interpretación
Según el documento, ¿cuál de estas técnicas combina flotación y sedimentación?
Técnica de Ritchie
Técnica de Willis
Técnica de Faust
Técnica de Baermann
Técnica de Kato-Katz
El documento menciona que la coloración de Ziehl-Neelsen es útil para:
Trofozoítos de Entamoeba histolytica
Quistes de Giardia lamblia
Coquistes de Cryptosporidium spp.
Larvas de Strongyloides stercoralis
Huevos de Schistosoma mansoni
Según el documento, los "exámenes de gabinete" incluyen:
Técnicas de concentración parasitológica
Métodos serológicos para detección de anticuerpos
Estudios de imagen como Rayos X y TAC
Técnicas de cultivo parasitológico
Métodos moleculares como la PCR
El documento describe que la técnica de Harada-Mori se utiliza para:
Concentrar quistes de protozoarios
Cultivar heces para obtener larvas de nematodos
Realizar concentraciones por flotación
Evaluar la proliferación bacteriana
Cuantificar huevos en heces
Según el documento, la principal desventaja de la técnica de Kato-Katz es:
Su alto costo
No ser adecuada para heces diarreicas
Requerir personal muy especializado
Tener baja sensibilidad
Requiere equipos complejos
El documento establece que en la técnica de Baermann, la muestra debe ser:
Seca
Líquida
Fija en formol
Fija en alcohol
Fija en PVA
Según el documento, el diagnóstico etiológico corresponde a:
La identificación de la causa específica de la enfermedad
Las manifestaciones clínicas del paciente
Los antecedentes epidemiológicos
Los exámenes de gabinete
La sospecha clínico-epidemiológica
El documento menciona que para la observación de microfilarias móviles, el método de elección es:
Gota gruesa coloreada
Extendido sanguíneo
Examen directo en fresco de sangre
Técnica de Strout
Xenodiagnóstico
Según el documento, las muestras con moco y/o sangre deben priorizarse para el examen porque:
Son más fáciles de procesar
Tienen mayor probabilidad de contener parásitos patógenos
Requieren menos cantidad para el análisis
Se procesan en laboratorio especializado
Permiten mejor observación microscópica
El documento describe que la técnica de Ritchie utiliza:
Sulfato de zinc
Solución de azúcar
Formol y éter
Cloruro de sodio
Alcohol polivinílico
Según el documento, en la inmunofluorescencia indirecta, un resultado positivo se evidencia por:
Cambio de color del sustrato
Aglutinación visible
Fluorescencia del antígeno
Precipitación en agar
Hemólisis de eritrocitos
El documento establece que el mayor riesgo en las técnicas de biología molecular es:
El alto costo
La necesidad de personal entrenado
La posibilidad de contaminación
El tiempo prolongado
La baja especificidad
Según el documento, la técnica de Strout se utiliza para:
Concentrar microfilarias en sangre
Diagnosticar malaria
Identificar trofozoítos en heces
Detectar anticuerpos en suero
Cultivar parásitos intestinales
El documento menciona que las coloraciones panópticas como Giemsa se utilizan para:
Protozoarios hemotisulares
Helmintos intestinales
Protozoarios intestinales
Artrópodos
Hongos
Según el documento, el diagnóstico epidemiológico se basa en:
Los signos y síntomas del paciente
Los exámenes de laboratorio
Los antecedentes de exposición a riesgo
Los estudios de imagen
Las pruebas serológicas
El documento establece que en la PCR, la enzima utilizada es:
ADN ligasa
Transcriptasa reversa
Taq polimerasa
ADN helicasa
ADN nucleasa
Según el documento, la cantidad recomendada de heces para examen es:
1-2 g
3-6 g
7-10 g
11-15 g
Más de 15 g
El documento menciona que para el examen coproparasitoscópico se pueden utilizar:
Muestras únicas siempre
3 a 5 muestras en días alternos
Solo muestras matutinas
Muestras conservadas por más de una semana
Solo muestras recién emitidas
Según el documento, la técnica de Willis utiliza:
Formol y éter
Sulfato de zinc
Solución sobresaturada de NaCl
Alcohol polivinílico
Fenol-alcohol-formol
El documento establece que el equipo donde se realiza la PCR se denomina:
Espectrofotómetro
Citómetro de flujo
Termociclador
Microscopio de fluorescencia
Centrífuga refrigerada
Según el documento, en la inmunohistoquímica se utilizan:
Medios de cultivo especiales
Anticuerpos marcados
Colorantes vitales
Soluciones de flotación
Reactivos de concentración
El documento menciona que las pruebas de inmunocromatografía son análogas a:
Las técnicas de concentración
Los exámenes directos en fresco
Las pruebas de embarazo
Las coloraciones permanentes
Los métodos de cultivo
Según el documento, en la reacción de fijación de complemento, la positividad se evidencia por:
Ausencia de hemólisis
Presencia de hemólisis
Cambio de color
Aglutinación
Fluorescencia
El documento establece que en ELISA, el cambio de color indica:
Contaminación de la muestra
Reacción negativa
Reacción positiva
Necesidad de repetir la prueba
Error técnico
Según el documento, los métodos directos permiten:
Detectar anticuerpos específicos
Observar directamente el parásito
Identificar antígenos circulantes
Amplificar ADN parasitario
Realizar pruebas de sensibilidad
El documento menciona que los métodos indirectos detectan:
Formas parasitarias completas
Sustancias o reacciones específicas del huésped
Estructuras morfológicas del parásito
Huevos y quistes en heces
Larvas en tejidos
Según el documento, la intradermorreacción explora:
Inmunidad humoral
Inmunidad celular
Producción de anticuerpos
Respuesta inflamatoria aguda
Activación del complemento
El documento establece que en el informe de resultados debe incluirse:
El tratamiento recomendado
El diagnóstico clínico presuntivo
El método realizado
La fecha de próxima consulta
El costo del análisis
Según el documento, las características organolépticas de las heces incluyen:
Presencia de leucocitos
Consistencia y color
Número de parásitos
Tipo de técnica utilizada
Resultado del examen
El documento menciona que la técnica de Sheather utiliza:
Solución de azúcar
Sulfato de zinc
Formol y éter
Cloruro de sodio
Alcohol polivinílico
Según el documento, el diagnóstico molecular busca identificar:
Anticuerpos específicos
Antígenos circulantes
El genoma del parásito
Proteínas parasitarias
Metabolitos del parásito
El documento establece que en la PCR, los cebadores son:
Enzimas termorresistentes
Fragmentos de ADN de doble cadena
Secuencias conocidas de nucleótidos
Reactivos de desnaturalización
Sondas colorimétricas
Según el documento, la electroforesis en agarosa se utiliza para:
Verificar la amplificación en PCR
Concentrar extensiones en heces
Recortar extensiones sanguíneas
Detectar anticuerpos en suero
Realizar pruebas de sensibilidad
El documento menciona que las técnicas moleculares se recomiendan por su:
Bajo costo y simplicidad
Rapidez de ejecución
Alta sensibilidad y especificidad
Inmunidad a contaminación
Facilidad de interpretación
Según el documento, el xenodiagnóstico reproduce:
El ciclo biológico en vectores
La respuesta inmunológica
Las reacciones antígeno-anticuerpo
La multiplicación en medios de cultivo
La tinción de muestras biológicas
El documento establece que en inmunofluorescencia directa, lo que se marca es:
El antígeno del parásito
El anticuerpo específico conocido
El suero del paciente
La anti-inmunoglobulina humana
El marcador fluorescente
Según el documento, en las reacciones de aglutinación, el fenómeno se observa:
Al microscopio de fluorescencia
Por cambio de color
A simple vista
En medios de cultivo
En geles de agarosa
El documento menciona que la hemaglutinación indirecta utiliza:
Partículas de látex
Glóbulos rojos como soporte
Enzimas marcadoras
Fluorocromos
Radioisótopos
Según el documento, en inmunodifusión doble:
La migración es unidireccional
Solo hay un pozo de antígeno
La migración es en ambos sentidos
Se utiliza campo eléctrico
No se forman precipitados
El documento establece que en inmunoelectroforesis:
No se usa campo eléctrico
La difusión es simple
La difusión es facilitada por campo eléctrico
No se forman precipitados
Es una técnica de precipitación
Según el documento, los métodos cualitativos permiten:
Calcular la carga parasitaria
Identificar parásitos pero no su cantidad
Determinar parásitos y su cantidad
Identificar parásitos por infección
Resumir el número de parásitos
