wayground logo

Free Printable Worksheets

Font size

S
M
L
XL
Worksheets

Toma de Muestras y Recepción: La Primera y Más Crucial Etapa

Total questions: 99

Worksheet time: 50mins

Name
Class
Date
1.

¿Cuál es el objetivo principal de la toma correcta de muestras en el proceso infeccioso del paciente?

a)

Obtener un antibiótico relevante

b)

Aislar el agente etiológico real y obtener un antibiograma relevante, evitando que la flora comensal o la contaminación externa distorsionen el diagnóstico

c)

Administrar cualquier dosis de antimicrobiano

d)

Recolectar la muestra en cualquier momento

2.

Complete el espacio en blanco: La muestra debe tomarse en la fase aguda de la enfermedad y, crucialmente, antes de la administración de _________

a)

antibióticos

b)

analgésicos

c)

vacunas

d)

antivirales

3.

¿Por qué es importante la asepsia estricta al tomar una muestra?

a)

Para ahorrar tiempo

b)

Para evitar la identificación de un contaminante como patógeno, resultando en un diagnóstico y tratamiento erróneos

c)

Para obtener más volumen

d)

Para evitar la administración de antibióticos

4.

La muestra debe tomarse directamente del sitio de la infección activa, no solo de un hisopado superficial.

a)

Verdadero

b)

Falso

5.

¿Cuál es el volumen adecuado recomendado para la recolección de sangre en adultos para hemocultivos?

a)

1 ml

b)

5 ml

c)

10 ml

d)

20 ml

6.

Complete el espacio en blanco: Una muestra mal identificada es tan inútil como una mal tomada, ya que los resultados pertenecerán al paciente _________.

a)

equivocado

b)

correcto

c)

ausente

d)

nuevo

e)

anterior

7.

¿Cuándo debe colocarse la etiqueta en el recipiente de la muestra?

a)

Antes de la toma

b)

Inmediatamente después de la toma, a pie de cama o en el consultorio

c)

Al llegar al laboratorio

d)

Antes de entregar al paciente

8.

¿Qué información debe incluir la etiqueta de una muestra según el documento?

a)

Nombre completo del paciente, número de identificación único, tipo y sitio exacto de la muestra, fecha y hora exactas de la recolección.

b)

Solo el nombre del paciente y la fecha de recolección.

c)

Únicamente el tipo de muestra y el número de identificación.

d)

Nombre del paciente, tipo de muestra y hora de recolección, sin necesidad de sitio exacto.

9.

¿Cuál es el propósito infectológico de los hemocultivos (sangre)?

a)

Diagnóstico de Bacteriemia o Sepsis.

b)

Evaluar la función hepática.

c)

Detectar anemia.

d)

Medir los niveles de glucosa en sangre.

10.

¿Qué técnica específica se recomienda para la toma de hemocultivos (sangre)?

a)

Antisepsia rigurosa: usar clorhexidina alcohólica al 2% y dejar secar por ≈30 segundos. Inocular el volumen adecuado (típicamente 10 mL por frasco/adulto) en frascos aerobios y anaerobios.

b)

Usar únicamente alcohol isopropílico al 70% y no esperar a que se seque antes de la punción.

c)

Tomar la muestra con guantes sin desinfectar la piel y usar cualquier volumen de sangre disponible.

d)

Inocular la sangre solo en frascos aerobios y omitir los anaerobios para simplificar el procedimiento.

11.

¿Cuál es el propósito infectológico del líquido cefalorraquídeo (LCR)?

a)

Diagnóstico de Meningitis/Meningoencefalitis.

b)

Evaluación de la función renal.

c)

Detección de enfermedades cardíacas.

d)

Medición de la presión arterial.

12.

¿Qué muestra es la de elección para infecciones de tejidos blandos u osteomielitis?

a)

Aspiración con aguja y jeringa (por punción percutánea o en quirófano).

b)

Hisopado superficial de la herida.

c)

Muestra de sangre periférica.

d)

Cultivo de orina.

13.

En Infectología, ¿qué indica la presencia de múltiples bacterias (polimicrobiana) en muestras no estériles?

a)

A menudo indica una muestra contaminada o mal tomada, no necesariamente una infección compleja.

b)

Siempre indica una infección grave y sistémica.

c)

Es un hallazgo normal y no requiere atención.

d)

Indica la presencia de un solo tipo de bacteria patógena.

14.

Diferenciar Flora vs. Patógeno: ¿Qué característica tiene un esputo que debe ser rechazado?

a)

Un esputo con muchas células epiteliales y pocas células inflamatorias al examen directo es una muestra de saliva (contaminación oral) y debe ser rechazada.

b)

Un esputo con abundantes leucocitos polimorfonucleares es adecuado para cultivo.

c)

Un esputo con presencia de bacilos gramnegativos siempre es aceptable.

d)

Un esputo con coloración homogénea y sin células epiteliales es ideal para análisis.

15.

¿Cuál es el procedimiento correcto para tomar una muestra de una herida crónica según el texto?

a)

Limpiar la superficie y tomar la muestra de la base activa de la lesión con un hisopo o aspirado de tejido.

b)

Tomar la muestra directamente de la costra superficial sin limpiar la herida.

c)

Utilizar únicamente un hisopo seco sobre la piel intacta alrededor de la herida.

d)

Recolectar la muestra después de aplicar un antiséptico fuerte en toda la herida.

16.

¿En qué casos se debe usar hisopos con medio de transporte (Amies/Stuart) según el texto?

a)

Solo para sitios donde no se pueden obtener fluidos o tejidos (ej., faringe).

b)

Para cualquier tipo de muestra, incluyendo sangre y orina.

c)

Siempre que se tomen muestras de piel intacta.

d)

En todos los procedimientos quirúrgicos.

17.

¿Cuál es la condición de transporte ideal para LCR, sangre, líquidos de sitios estériles, anaerobios y genitales?

a)

Temperatura Ambiente (20°C a 25°C)

b)

Congelación (-20°C a -80°C)

c)

Temperatura de refrigeración (2°C a 8°C)

d)

Incubación a 37°C

18.

¿Por qué es importante la refrigeración (2°C a 8°C) para orina, heces, esputo e hisopados (bacterias comunes)?

a)

La refrigeración es esencial para inhibir la multiplicación de contaminantes comunes y prevenir un falso positivo por sobrecrecimiento (ej., en orina).

b)

La refrigeración mejora la visibilidad de las bacterias al microscopio.

c)

La refrigeración elimina completamente todas las bacterias presentes en la muestra.

d)

La refrigeración facilita la solidificación de la muestra para su transporte.

19.

¿Qué condición de transporte es adecuada para muestras virales y para biología molecular (PCR)?

a)

Temperatura ambiente

b)

Refrigeración (2°C a 8°C) o Congelación

c)

Solo congelación

20.

¿Cuál es el tiempo ideal de entrega de las muestras al laboratorio?

a)

Menos de 2 horas.

b)

Entre 4 y 6 horas.

c)

Más de 8 horas.

d)

Entre 10 y 12 horas.

21.

¿Cómo se clasifican generalmente las muestras clínicas de Infectología según las normas internacionales de embalaje?

a)

Como Sustancias Biológicas Categoría B (UN 3373).

b)

Como Material Radiactivo (UN 2915).

c)

Como Sustancias Infecciosas Categoría A (UN 2814).

d)

Como Residuos Químicos Peligrosos (UN 3291).

22.

¿Cuál es la función infectológica del Recipiente Primario en el Sistema de Triple Embalaje?

a)

Es el primer punto de contención del agente infeccioso y de identificación inequívoca (etiqueta del paciente, fecha, hora, tipo de muestra).

b)

Sirve únicamente para el transporte externo del material biológico.

c)

Es responsable de la desinfección del área de trabajo.

d)

Se utiliza para almacenar los materiales de protección personal.

23.

¿Qué característica debe tener el Embalaje Secundario en el Sistema de Triple Embalaje?

a)

Debe ser impermeable y resistente.

b)

Debe ser transparente y flexible.

c)

Debe ser biodegradable y comestible.

d)

Debe ser decorativo y colorido.

24.

¿Cuál es la función del material absorbente en el Embalaje Secundario?

a)

Contener cualquier derrame y absorber la totalidad del volumen de líquido en caso de rotura.

b)

Evitar que el embalaje se cierre herméticamente.

c)

Aumentar el peso del embalaje para facilitar su transporte.

d)

Proteger el contenido de la luz solar directa.

25.

¿Qué debe incluir el Embalaje Exterior para proteger la muestra?

a)

Debe ser rígido o robusto (ej., caja de cartón o isotérmica) y debe incluir la documentación (solicitud) en un sobre de plástico entre el secundario y el exterior.

b)

Debe ser transparente y flexible, sin necesidad de documentación adicional.

c)

Solo debe contener etiquetas de colores para identificación rápida.

d)

Debe estar hecho únicamente de materiales biodegradables y no requiere documentación.

26.

¿Qué marca debe llevar el etiquetado crítico en el Sistema de Triple Embalaje?

a)

UN 3373 (Sustancia Biológica, Categoría B)

b)

UN 2814 (Sustancia infecciosa, que afecta a los humanos)

c)

UN 2900 (Sustancia infecciosa, que afecta solo a los animales)

d)

UN 1845 (Hielo seco)

27.

¿Cuáles son los tipos de microscopía que se pueden emplear para la observación microscópica convencional?

a)

Microscopía óptica (luz), Microscopía de campo oscuro, Microscopía de fluorescencia, Microscopía con métodos especiales / histopatológicos.

b)

Microscopía electrónica de barrido, Microscopía de fuerza atómica, Microscopía de sonda de barrido.

c)

Microscopía acústica, Microscopía de rayos X, Microscopía de neutrones.

d)

Microscopía holográfica, Microscopía de polarización, Microscopía de contraste de fase.

28.

¿Cuál es el objetivo principal de la tinción de Gram en bacteriología?

a)

Identificar parásitos sanguíneos

b)

Clasificar bacterias en Gram positivas o Gram negativas según la estructura de su pared celular

c)

Visualizar hongos

d)

Observar protozoos

29.

¿Qué tipo de bacterias se tiñen de púrpura en la tinción de Gram?

a)

Bacterias Gram positivas

b)

Bacterias Gram negativas

c)

Bacterias acidorresistentes

d)

Bacterias espiroquetas

30.

La tinción de Ziehl-Neelsen está diseñada principalmente para identificar:

a)

Protozoos

b)

Micobacterias

c)

Hongos

d)

Parásitos sanguíneos

31.

¿Cuál es una limitación de la tinción de Gram?

a)

No detecta bacterias en muy bajo número y no es útil para micobacterias, espiroquetas delgadas o algunos cocos atípicos.

b)

No puede diferenciar entre bacterias Gram positivas y Gram negativas.

c)

Solo se utiliza para identificar virus en muestras clínicas.

d)

Es útil únicamente para identificar hongos en muestras biológicas.

32.

¿La tinción de plata es útil para identificar hongos como Pneumocystis?

a)

Verdadero

b)

Falso

33.

¿Para qué se utiliza la tinción con ácido periódico de Schiff (PAS), tricrómico y Giemsa modificado?

a)

Para histología/inmunopatología de tejidos infectados con hongos, protozoos y bacterias intracelulares.

b)

Para identificar virus en muestras de sangre.

c)

Para medir la concentración de glucosa en sangre.

d)

Para detectar la presencia de lípidos en tejidos.

34.

¿En qué casos se recomienda la preparación húmeda/directa de muestras?

a)

Cuando se examina la muestra fresca sin tinción, por ejemplo, en líquidos como LCR, orina, esputo, heces, o para observar protozoos o larvas en parasitología.

b)

Cuando se requiere identificar bacterias mediante tinción de Gram exclusivamente.

c)

Solo cuando se van a realizar cultivos bacterianos en medios sólidos.

d)

Únicamente para la observación de células epiteliales en muestras teñidas.

35.

¿Qué tipo de microscopía se utiliza para observar bacterias muy delgadas y móviles como Treponema pallidum?

a)

Microscopía de campo oscuro

b)

Microscopía electrónica de transmisión

c)

Microscopía de fluorescencia

d)

Microscopía de contraste de fases

36.

¿Cuál es una desventaja de la microscopía de fluorescencia?

a)

Requiere técnica especializada, oscuridad cuidada, microscopio adecuado; no es frecuente en laboratorios básicos.

b)

Permite observar organismos vivos sin ningún tipo de preparación.

c)

No requiere ningún tipo de equipo especial para su uso.

d)

Es la técnica más económica y accesible para todos los laboratorios.

37.

¿Qué permite la microscopía de fluorescencia en la detección de microorganismos?

a)

Detección inespecífica

b)

Especificidad en la detección de virus, bacterias o protozoos

c)

Solo visualización de bacterias

d)

Solo visualización de protozoos

38.

¿En qué consiste la inmunohistoquímica en muestras tisulares?

a)

En emplear anticuerpos específicos que reconocen antígenos microbianos para teñido, permitiendo localizar el patógeno dentro del tejido y en relación con la lesión histopatológica.

b)

En utilizar colorantes generales para observar la morfología celular sin identificar patógenos específicos.

c)

En aplicar técnicas de cultivo para aislar microorganismos presentes en el tejido.

d)

En emplear radiación para visualizar estructuras internas del tejido.

39.

¿Qué tipo de inmunoglobulinas se pueden detectar en la serología dependiendo del momento de la infección?

a)

IgM, IgG o ambos.

b)

IgA solamente.

c)

IgE y IgD únicamente.

d)

Solo IgD.

40.

La aglutinación se basa en la formación de agregados visibles cuando los anticuerpos se unen a antígenos sobre partículas.

a)

Verdadero

b)

Falso

41.

¿Cuál es la prueba que detecta anticuerpos anti-O y anti-H para Salmonella?

a)

La prueba de Widal.

b)

Prueba de ELISA.

c)

Prueba de Coombs.

d)

Prueba de Mantoux.

42.

¿En qué consiste la técnica de fijación del complemento (CFT)?

a)

Se basa en que un complejo antígeno-anticuerpo activa el complemento y lo consume; luego se añade un sistema indicador y si el complemento ya está consumido, no causa lisis del sistema indicador.

b)

Consiste en medir la cantidad de anticuerpos presentes mediante fluorescencia directa.

c)

Se utiliza para identificar bacterias mediante tinción de Gram y observación microscópica.

d)

Permite cuantificar proteínas séricas usando electroforesis en gel.

43.

¿Qué permite la inmunofluorescencia indirecta (IFI)?

a)

Permite localización citológica y es bastante específica.

b)

Detecta bacterias en cultivos de sangre.

c)

Mide la presión arterial de forma indirecta.

d)

Determina la concentración de glucosa en sangre.

44.

¿Cuál es uno de los métodos más usados para detectar IgM, IgG, IgA, antígeno específico, etc.?

a)

Enzimoinmunoensayos (EIA o ELISA).

b)

Cromatografía en papel.

c)

Electroforesis en gel de agarosa.

d)

Centrifugación diferencial.

45.

¿Qué mide el ensayo de neutralización de virus?

a)

Mide la capacidad del suero del paciente para neutralizar la infectividad de un virus conocido en cultivo.

b)

Mide la cantidad de anticuerpos totales presentes en la sangre.

c)

Mide la velocidad de replicación del virus en el organismo.

d)

Mide la resistencia del virus a los antibióticos.

46.

¿Para qué tipo de virus se usa la inhibición de hemaglutinación?

a)

Para virus que aglutinan eritrocitos, como influenza y parainfluenza.

b)

Para virus que causan lisis celular directa.

c)

Para virus que infectan exclusivamente bacterias.

d)

Para virus que no presentan envoltura.

47.

¿Cuál es la función principal de la multiplexación / tecnologías multiplex en la serología convencional?

a)

Permitir medir múltiples anticuerpos en una misma muestra sérica, ahorrando volumen de muestra y tiempo.

b)

Mejorar la reproducibilidad entre laboratorios.

c)

Optimizar epítopos usados como antígeno.

d)

Uso de microchips para fijar antígenos.

48.

¿Qué permite el uso de microarrays serológicos?

a)

Medir múltiples anticuerpos en una muestra.

b)

Uso de microchips en los que se fijan distintos antígenos, permitiendo un panel amplio de detección.

c)

Mejorar la reproducibilidad entre laboratorios.

d)

Optimizar epítopos usados como antígeno.

49.

¿Cuál es el objetivo de los estándares universales y la normalización en la serología convencional?

a)

Mejorar la reproducibilidad entre laboratorios.

b)

Medir múltiples anticuerpos en una muestra.

c)

Uso de microchips para fijar antígenos.

d)

Optimizar epítopos usados como antígeno.

50.

La reducción de reactivos cruzados en la serología convencional implica la optimización de ______ usados como antígeno para mejorar sensibilidad y especificidad.

a)

epítopos

b)

enzimas

c)

anticuerpos

d)

sustratos

51.

¿Para qué se utiliza la integración con vigilancia seroepidemiológica en la serología convencional?

a)

Para estimar exposición en poblaciones, vigilancia del impacto de vacunación y estimación del “pool silencioso” de infecciones.

b)

Para medir múltiples anticuerpos en una muestra.

c)

Para mejorar la reproducibilidad entre laboratorios.

d)

Para optimizar epítopos usados como antígeno.

52.

¿Por qué es importante el aislamiento e identificación de microorganismos patógenos en microbiología clínica?

a)

Porque permite establecer con precisión el agente causal de una enfermedad infecciosa y orientar un tratamiento antimicrobiano adecuado.

b)

Porque ayuda a mejorar la apariencia de las muestras en el laboratorio.

c)

Porque facilita la conservación de los microorganismos para estudios futuros sin relevancia clínica.

d)

Porque permite descartar la necesidad de realizar pruebas adicionales en el paciente.

53.

¿Cuál es el objetivo principal del aislamiento de microorganismos patógenos según el texto?

a)

Obtener una colonia pura del microorganismo para su identificación, caracterización y estudio

b)

Eliminar todos los microorganismos de la muestra

c)

Realizar pruebas de sensibilidad a los antimicrobianos

d)

Conservar la muestra por más tiempo

54.

Complete el espacio en blanco: El aislamiento de microorganismos patógenos es un procedimiento esencial en ________, ya que permite obtener colonias puras a partir de una muestra clínica.

a)

microbiología clínica

b)

análisis químico

c)

fisiología vegetal

d)

histología animal

55.

Seleccione dos tipos de muestras clínicas que pueden ser utilizadas para el aislamiento de microorganismos patógenos.

a)

Sangre y orina

b)

Saliva y sudor

c)

Lágrimas y cabello

d)

Uñas y piel seca

56.

La correcta recolección, conservación y transporte de las muestras clínicas es importante porque:

a)

Evita la alteración de los resultados y asegura un diagnóstico preciso.

b)

Permite ahorrar tiempo en el laboratorio sin importar la calidad de la muestra.

c)

Facilita el transporte de cualquier tipo de muestra sin riesgos.

d)

Reduce la necesidad de personal capacitado en el manejo de muestras.

57.

¿Qué tipo de medio de cultivo favorece el crecimiento de la mayoría de bacterias?

a)

Medios no selectivos

b)

Medios selectivos

c)

Medios diferenciales

d)

Medios enriquecidos

58.

¿Qué tipo de medio de cultivo contiene sustancias inhibidoras que permiten el crecimiento de ciertos grupos microbianos e inhiben otros?

a)

Medios selectivos

b)

Medios diferenciales

c)

Medios enriquecidos

d)

Medios generales

59.

¿Qué tipo de medio de cultivo permite distinguir especies microbianas a través de cambios de color, producción de enzimas o fermentación de azúcares?

a)

Medios diferenciales

b)

Medios enriquecidos

c)

Medios selectivos

d)

Medios mínimos

60.

¿Qué tipo de medio de cultivo está suplementado para favorecer microorganismos exigentes como Haemophilus influenzae o Neisseria?

a)

Medios enriquecidos

b)

Medios selectivos

c)

Medios diferenciales

d)

Medios mínimos

61.

¿Qué tipo de medio de cultivo permite la identificación presuntiva de microorganismos mediante el uso de sustratos cromogénicos?

a)

Medios cromógenos

b)

Medios enriquecidos

c)

Medios selectivos

d)

Medios diferenciales

62.

¿Cuál de los siguientes NO es un tipo de medio de cultivo mencionado en el texto?

a)

Medios no selectivos

b)

Medios selectivos

c)

Medios ácidos

d)

Medios diferenciales

63.

¿Cómo se cultivan generalmente las bacterias según el texto?

a)

En medios sólidos y líquidos bajo condiciones aeróbicas o anaeróbicas

b)

En medios líquidos solamente

c)

En medios sólidos solamente

d)

En medios con antibióticos únicamente

64.

¿Qué requieren los hongos y levaduras para su aislamiento según el texto?

a)

Medios con antibióticos únicamente

b)

Medios como agar Sabouraud, ajustes de pH y antibióticos para inhibir bacterias

c)

Medios líquidos bajo condiciones anaeróbicas

d)

Medios sólidos sin ajustes de pH

65.

El aislamiento de patógenos debe realizarse en condiciones de bioseguridad apropiadas (BSL-2 o BSL-3 según el agente).

a)

Verdadero

b)

Falso

66.

Menciona una de las finalidades del aislamiento en la relevancia clínica y epidemiológica según el texto.

a)

Detectar brotes infecciosos / Identificar la circulación de cepas resistentes a antimicrobianos / Establecer correlaciones entre el agente aislado y el cuadro clínico / Generar datos para vigilancia epidemiológica hospitalaria y comunitaria

b)

Reducir el tiempo de hospitalización de todos los pacientes

c)

Mejorar la nutrición del paciente infectado

d)

Aumentar la resistencia del agente infeccioso

67.

La identificación de microorganismos patógenos es el proceso mediante el cual se reconoce y caracteriza al agente causal de una enfermedad infecciosa, una vez que ha sido aislado de una muestra clínica.

a)

Verdadero

b)

Falso

68.

¿Cuál es la relevancia del proceso identificatorio de microorganismos patógenos según el texto?

a)

Permite reconocer el género, especie y características específicas de cepas clínicas

b)

Solo sirve para observar microorganismos

c)

No tiene importancia clínica

d)

Es un proceso opcional en el diagnóstico

69.

¿Cuál de las siguientes técnicas es un método tradicional de identificación de microorganismos?

a)

Inmunoensayos

b)

Morfología microscópica

c)

Espectrometría de masas MALDI-TOF

d)

Biología molecular

70.

Complete la frase: La caracterización de colonias se basa en la observación de ______, tamaño, color, textura y hemólisis de las colonias en medios sólidos.

a)

forma

b)

peso

c)

volumen

d)

profundidad

71.

¿Cuál de las siguientes pruebas revela las capacidades metabólicas del microorganismo?

a)

Pruebas bioquímicas

b)

Sistemas multiprueba

c)

Inmunoensayos

d)

Espectrometría de masas MALDI-TOF

72.

¿Qué técnica avanzada permite la detección de antígenos específicos mediante aglutinación, ELISA o inmunofluorescencia?

a)

Biología molecular

b)

Inmunoensayos

c)

Pruebas bioquímicas

d)

Sistemas multiprueba

73.

La PCR (Reacción en cadena de la polimerasa) se utiliza para la amplificación de ______ específicas.

a)

secuencias

b)

proteínas

c)

células

d)

orgánulos

74.

La espectrometría de masas MALDI-TOF identifica microorganismos en minutos comparando perfiles ______ con bases de datos.

a)

proteicos

b)

lipídicos

c)

carbohidratos

d)

genéticos

75.

¿Verdadero o falso? La secuenciación de genes como el 16S rRNA se utiliza para identificar bacterias.

a)

Verdadero

b)

Falso

76.

¿Qué sistemas automatizados se mencionan para la identificación y antibiograma rápido?

a)

VITEK, Phoenix, MicroScan

b)

BD BACTEC, GeneXpert, FilmArray

c)

Cobas, ARCHITECT, Elecsys

d)

Cepheid, Alinity, Panther

77.

¿Cuál de los siguientes métodos NO se utiliza para la identificación de bacterias?

a)

Tinciones

b)

Cultivos diferenciales

c)

Pruebas bioquímicas

d)

Morfología microscópica

78.

La identificación de hongos se basa en la morfología microscópica, características de crecimiento en agar Sabouraud, pruebas de asimilación de azúcares y técnicas ________.

a)

moleculares

b)

enzimáticas

c)

fotográficas

d)

químicas

79.

¿Qué técnica se requiere para la identificación de virus?

a)

Cultivo en medios convencionales

b)

Técnicas indirectas como cultivo en células, inmunoensayos o PCR

c)

Pruebas de asimilación de azúcares

d)

Observación microscópica directa

80.

La identificación de parásitos suele basarse en observación microscópica directa, pruebas inmunológicas o técnicas ________.

a)

moleculares

b)

químicas

c)

físicas

d)

enzimáticas

81.

¿Cuál de los siguientes NO es un factor a correlacionar en la interpretación clínica de un patógeno?

a)

Tipo de muestra clínica

b)

Cantidad de microorganismos recuperados

c)

Cuadro clínico del paciente

d)

Edad del paciente

82.

¿Por qué es importante correlacionar los hallazgos de laboratorio con el cuadro clínico del paciente?

a)

Para evitar atribuir erróneamente un resultado positivo a un microorganismo que no sea el verdadero agente causal.

b)

Para reducir el tiempo de procesamiento de las muestras.

c)

Para disminuir el costo de los exámenes de laboratorio.

d)

Para asegurar que todos los pacientes reciban el mismo tratamiento.

83.

¿Cuál de las siguientes NO es una función de la identificación precisa de patógenos?

a)

Permite instaurar un tratamiento dirigido y racional

b)

Ayuda en el control de infecciones nosocomiales

c)

Contribuye a la vigilancia de la resistencia antimicrobiana

d)

Aumenta la resistencia antimicrobiana

84.

¿Cuál es el primer paso en el mecanismo de acción de la inmunocromatografía?

a)

Conjugación

b)

Aplicación de la muestra

c)

Reacción inmunológica

d)

Captura en la línea de test

85.

En la inmunocromatografía, ¿qué ocurre durante la conjugación?

a)

La muestra migra por capilaridad y entra en contacto con anticuerpos conjugados con partículas visibles, como oro coloidal o nanopartículas de látex.

b)

Se produce la separación de los componentes de la muestra mediante un campo eléctrico.

c)

La muestra se mezcla con un reactivo que cambia de color en presencia de un analito específico.

d)

Se realiza la amplificación del ADN presente en la muestra.

86.

¿Qué se forma si el antígeno o anticuerpo diana está presente en la muestra durante la reacción inmunológica?

a)

Un complejo inmune.

b)

Una solución salina.

c)

Un precipitado de glucosa.

d)

Un enlace covalente.

87.

¿Qué línea garantiza que el test ha funcionado correctamente, independientemente del resultado?

a)

Línea de test (T)

b)

Línea de control (C)

c)

Línea de muestra

d)

Línea de conjugación

88.

Resultado positivo: aparecen las líneas "T" y "C".

a)

Verdadero

b)

Falso

89.

¿Qué tipo de muestra se utiliza para la prueba de anticuerpos anti-VIH 1/2 según la tabla de ejemplos?

a)

Sangre/Plasma

b)

Orina

c)

Saliva

d)

Líquido cefalorraquídeo

90.

¿Cuál es la diana inmunológica de la prueba de anticuerpos anti-VIH 1/2?

a)

Anticuerpos

b)

Linfocitos T CD4+

c)

ARN viral

d)

Proteínas de la cápside

91.

¿Cuál es la diana inmunológica de la prueba rápida para Hepatitis B?

a)

Antígeno viral

b)

Antígeno de superficie

c)

Anticuerpos

d)

Antígenos parasitarios

92.

Completa el espacio en blanco: La muestra utilizada para la prueba de Dengue es _________.

a)

Sangre/Plasma

b)

Orina

c)

Saliva

d)

Sudor

93.

¿Qué tipo de muestra se utiliza para la prueba de COVID-19 según la tabla?

a)

Sangre/Plasma

b)

Hisopado nasal/faríngeo

c)

Suero

d)

Orina

94.

La prueba treponémica se utiliza para detectar:

a)

Malaria

b)

Sífilis

c)

Influenza

d)

Dengue

95.

¿Cuál es la diana inmunológica de la prueba rápida para Malaria?

a)

Antígenos parasitarios

b)

Antígeno viral

c)

Anticuerpos

d)

Antígeno de superficie

96.

Completa el espacio en blanco: Una de las ventajas de las Pruebas Rápidas ICT es que los resultados se obtienen en menos de ______ minutos.

a)

30

b)

60

c)

10

d)

45

97.

¿Verdadero o falso? Las pruebas rápidas ICT requieren equipamiento sofisticado y electricidad.

a)

Verdadero

b)

Falso

98.

¿Qué detecta la inmunocromatografía para detección de antígenos?

a)

Anticuerpos generados por el huésped

b)

Antígenos específicos del patógeno

c)

Células sanguíneas

d)

Proteínas plasmáticas

99.

¿Cuál de los siguientes formatos es utilizado principalmente para la detección de antígenos virales y bacterianos?

a)

Formato Competitivo

b)

Formato Tipo Sándwich

c)

Formato Indirecto

d)

Formato Directo