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Cuestionario de Bioquímica

Total questions: 99

Worksheet time: 50mins

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1.

¿Qué compuesto se forma primero a partir del piruvato en organismos que realizan respiración aeróbica?

a)

Acetil-CoA

b)

NADH

c)

FADH2

d)

ATP

2.

¿Cuál es el papel de los transportadores de electrones reducidos en el ciclo de Krebs?

a)

Producir CO2

b)

Donar electrones de alta energía

c)

Generar GTP

d)

Formar piruvato

3.

¿Qué se requiere para que un microorganismo utilice el citrato como única fuente de carbono y energía?

a)

Presencia de una citrato permeasa

b)

Producción de ATP

c)

Formación de CO2

d)

Generación de NADH

4.

¿Qué indica un cambio de color a amarillo en el caldo de fermentación con rojo de fenol?

a)

Producción de ácido

b)

Producción de gas

c)

Reacción alcalina

d)

Crecimiento de hongos

5.

¿Cuál es el propósito del tubo de Durham en el caldo de fermentación?

a)

Detectar la producción de gas

b)

Medir el pH del medio

c)

Proveer nutrientes adicionales

d)

Mantener la temperatura constante

6.

¿Qué sucede si el caldo permanece de color rojo/púrpura después de la incubación?

a)

Indica fermentación positiva

b)

Indica producción de gas

c)

Indica ausencia de fermentación

d)

Indica reacción alcalina

7.

¿Qué puede causar que el indicador de pH vuelva a rojo después de agotarse el suministro de carbohidratos?

a)

Producción de amoníaco

b)

Producción de ácido

c)

Producción de gas

d)

Crecimiento de bacterias

8.

¿Cuál es el propósito principal de la prueba de Oxidación-Fermentación (OF) según el medio de Hugh-Leifson?

a)

Diferenciar microorganismos según su estrategia metabólica

b)

Medir la temperatura de incubación

c)

Detectar la presencia de oxígeno

d)

Identificar la presencia de peptonas

9.

¿Qué indicador de pH se utiliza en el medio de Hugh-Leifson?

a)

Fenolftaleína

b)

Azul de bromotimol

c)

Rojo de metilo

d)

Verde de bromocresol

10.

¿Cómo se interpreta un resultado oxidante (O) en la prueba de OF?

a)

El tubo cerrado se vuelve amarillo

b)

El tubo abierto permanece verde

c)

El tubo abierto se vuelve amarillo

d)

Ambos tubos se vuelven azules

11.

¿Por qué se utiliza aceite mineral o parafina en la prueba de OF?

a)

Para aumentar la concentración de glucosa

b)

Para crear un ambiente anaeróbico

c)

Para cambiar el color del indicador de pH

d)

Para mejorar la consistencia del medio

12.

¿Cuál es el propósito principal de la prueba de Voges-Proskauer (VP)?

a)

Identificar organismos que utilizan la vía del butilenglicol para la fermentación de la glucosa.

b)

Detectar la presencia de ácido láctico en el cultivo.

c)

Medir el pH del medio de cultivo.

d)

Determinar la cantidad de glucosa en el medio.

13.

¿Qué compuesto se detecta en la prueba de VP como intermediario clave?

a)

Ácido acético

b)

Acetona

c)

Acetilmetilcarbinol (acetóina)

d)

Ácido fórmico

14.

¿Cuál es el resultado positivo en la interpretación de la prueba RM?

a)

El medio se vuelve azul.

b)

El medio permanece amarillo.

c)

Se desarrolla un color rojo brillante y estable.

d)

El medio se vuelve verde.

15.

¿Qué reactivo se utiliza para intensificar el color en la prueba de VP?

a)

Rojo de metilo

b)

Alfa-naftol

c)

Ácido acético

d)

Hidróxido de sodio

16.

¿Cuál es el propósito principal de la prueba de ONPG?

a)

Detectar la presencia de la enzima β-galactosidasa.

b)

Medir la cantidad de glucosa en una muestra.

c)

Identificar la presencia de oxígeno en el medio.

d)

Determinar el pH de una solución.

17.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba de ONPG?

a)

Desarrollo de un color amarillo.

b)

Cambio a color rojo.

c)

Permanencia de un color incoloro.

d)

Desarrollo de un color azul.

18.

¿Por qué es importante la agitación vigorosa en la interpretación de resultados?

a)

Para introducir oxígeno.

b)

Para mezclar los reactivos.

c)

Para calentar la solución.

d)

Para enfriar la muestra.

19.

¿Qué tipo de bacterias son típicamente VP-positivas según el texto?

a)

Klebsiella y Enterobacter.

b)

Salmonella y Citrobacter.

c)

Escherichia y Proteus.

d)

Staphylococcus y Streptococcus.

20.

¿Cuál es el principio de la prueba de hidrólisis del almidón?

a)

Detectar la producción de ureasa

b)

Determinar la capacidad de un microorganismo para secretar α-amilasa

c)

Medir el pH del medio

d)

Identificar la presencia de fenol

21.

¿Qué reactivo se utiliza en la prueba de hidrólisis del almidón?

a)

Solución de Lugol

b)

Fenol

c)

Agua destilada

d)

Ácido clorhídrico

22.

¿Qué indica un halo claro alrededor del área de crecimiento bacteriano en la prueba de hidrólisis del almidón?

a)

Presencia de almidón intacto

b)

Hidrólisis del almidón

c)

Ausencia de α-amilasa

d)

Contaminación del medio

23.

¿Qué enzima se detecta en la prueba de ureasa?

a)

α-amilasa

b)

Ureasa

c)

Lipasa

d)

Proteasa

24.

¿Qué cambio de pH se observa en la prueba de ureasa?

a)

Disminución del pH

b)

Aumento del pH

c)

No hay cambio de pH

d)

Fluctuación del pH

25.

¿Cuál es el propósito de la prueba del indol?

a)

Detectar la presencia de la enzima triptofanasa.

b)

Medir el pH del medio.

c)

Identificar la presencia de glucosa.

d)

Determinar la cantidad de urea.

26.

¿Qué medio se utiliza en la prueba del indol?

a)

Agar Urea.

b)

Caldo Triptona o medio SIM.

c)

Caldo Urea.

d)

Agar MacConkey.

27.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba del indol?

a)

El medio se vuelve rosa brillante.

b)

Se forma un anillo de color rojo o cereza.

c)

El medio permanece amarillo.

d)

El medio se vuelve azul.

28.

¿Cuál es el reactivo utilizado en la prueba del indol?

a)

Reactivo de Kovacs.

b)

Reactivo de Benedict.

c)

Reactivo de Fehling.

d)

Reactivo de Biuret.

29.

¿Cuál es el principio de la prueba de la fenilalanina desaminasa?

a)

Determina la capacidad de un organismo para producir la enzima fenilalanina desaminasa.

b)

Mide la producción de CO2 en un ambiente anaeróbico.

c)

Evalúa la presencia de glucosa en el medio.

d)

Detecta la presencia de proteínas en el organismo.

30.

¿Qué reactivo se utiliza en la prueba de la fenilalanina desaminasa?

a)

Cloruro férrico al 10%.

b)

Sulfato de cobre al 5%.

c)

Nitrato de plata al 15%.

d)

Ácido clorhídrico al 20%.

31.

¿Cuál es un resultado positivo en la prueba de la fenilalanina desaminasa?

a)

Color verde oscuro en el agar inclinado.

b)

Color rojo brillante en el medio.

c)

Color azul claro en el líquido de condensación.

d)

Color amarillo pálido en el agar.

32.

¿Qué diferencia a los géneros Proteus, Providencia y Morganella en la prueba de la fenilalanina desaminasa?

a)

Un resultado positivo.

b)

Un resultado negativo.

c)

La presencia de CO2.

d)

La ausencia de glucosa.

33.

¿Cuál es el principio de las pruebas de descarboxilación de aminoácidos?

a)

Determinan si un microbio posee enzimas descarboxilasas específicas.

b)

Miden la cantidad de glucosa en el medio.

c)

Detectan la presencia de proteínas en el organismo.

d)

Evalúan la producción de ácido fenilpirúvico.

34.

¿Cuál es el propósito de la prueba de descarboxilasa?

a)

Detectar la fermentación de la glucosa

b)

Producir aminas alcalinas

c)

Medir la temperatura de incubación

d)

Identificar la presencia de aceite mineral

35.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba de descarboxilasa?

a)

El tubo de control es púrpura

b)

Ambos tubos son amarillos

c)

El tubo con aminoácido es púrpura

d)

No hay cambio de color

36.

¿Cuál es el principio de la prueba de hidrólisis de la gelatina?

a)

Detectar la fermentación de la glucosa

b)

Medir la temperatura de incubación

c)

Detectar la secreción de exoenzimas proteolíticas

d)

Identificar la presencia de aceite mineral

37.

¿Qué sucede con la gelatina cuando es hidrolizada por las gelatinazas?

a)

Se solidifica a temperaturas más altas

b)

Pierde su capacidad de gelificar

c)

Se vuelve púrpura

d)

Se convierte en un gas

38.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba de refrigeración?

a)

El medio se vuelve sólido o gelatinoso.

b)

El medio permanece líquido después de la refrigeración.

c)

El medio cambia de color.

d)

El medio se evapora.

39.

¿Cuál es el propósito de la prueba de hidrólisis de la caseína?

a)

Identificar organismos que producen la exoenzima caseasa.

b)

Medir la temperatura de ebullición de la leche.

c)

Determinar el color de la leche.

d)

Evaluar la acidez de la leche.

40.

¿Qué medio se utiliza en la prueba de hidrólisis de la caseína?

a)

Agar Sangre.

b)

Agar Leche Descremada.

c)

Agar Chocolate.

d)

Agar MacConkey.

41.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba de hidrólisis de la caseína?

a)

El medio se vuelve opaco y blanco.

b)

Se observa una zona o halo claro alrededor del área de crecimiento bacteriano.

c)

El medio cambia de color a rojo.

d)

El medio se evapora.

42.

¿Qué enzima detecta la prueba de PYR?

a)

L-pirrolidonil arilamidasa.

b)

Lactasa.

c)

Amilasa.

d)

Proteasa.

43.

¿Cuál es el resultado positivo en la prueba de PYR?

a)

Color rojo brillante o rosa cereza

b)

No hay cambio de color

c)

Color amarillo/naranja

d)

Color azul

44.

¿Qué organismo es identificado presuntivamente por la prueba de PYR?

a)

Streptococcus pyogenes

b)

Escherichia coli

c)

Staphylococcus aureus

d)

Bacillus subtilis

45.

¿Cuál es el único reactivo necesario para la prueba de la catalasa?

a)

Solución al 3% de peróxido de hidrógeno

b)

Agua destilada

c)

Solución salina

d)

Alcohol etílico

46.

¿Qué función tiene la catalasa en las células?

a)

Cataliza la descomposición del peróxido de hidrógeno en agua y oxígeno

b)

Produce energía a partir de glucosa

c)

Sintetiza proteínas

d)

Descompone lípidos

47.

¿Cuál es el principio de la prueba de la oxidasa?

a)

Determina la presencia de la enzima citocromo c oxidasa.

b)

Mide la cantidad de oxígeno en una muestra.

c)

Identifica la presencia de catalasa en bacterias.

d)

Detecta la producción de gas hidrógeno.

48.

¿Qué resultado se considera positivo en la prueba de la oxidasa?

a)

Desarrollo de un color púrpura oscuro o azul profundo en 10-30 segundos.

b)

Aparición de burbujas rápidas y vigorosas.

c)

Cambio de color a verde en 5 segundos.

d)

Desarrollo de un color amarillo brillante.

49.

¿Por qué es importante no usar un asa de alambre de nicromo en la prueba de la oxidasa?

a)

Puede oxidarse y causar un resultado falso positivo.

b)

Es demasiado caro para usar en pruebas.

c)

No es lo suficientemente preciso para la prueba.

d)

Puede romper el papel de filtro.

50.

¿Qué bacterias se identifican como oxidasa-positivas en la prueba de la oxidasa?

a)

Neisseria, Pseudomonas, Moraxella y Vibrio.

b)

Staphylococcus y Micrococcus.

c)

Streptococcus y Enterococcus.

d)

Escherichia y Salmonella.

51.

¿Cuál es el propósito principal de la prueba de coagulasa?

a)

Diferenciar Staphylococcus aureus de otros estafilococos menos patógenos.

b)

Identificar la presencia de Enterobacteriaceae.

c)

Detectar la presencia de coágulos en la sangre.

d)

Medir la temperatura de incubación de bacterias.

52.

¿Qué tipo de coagulasa está unida a la pared celular bacteriana?

a)

Coagulasa Libre

b)

Coagulasa Ligada

c)

Coagulasa Reactiva

d)

Coagulasa Soluble

53.

¿Qué se utiliza como medio reactivo en la prueba de coagulasa libre?

a)

Plasma de conejo tratado con anticoagulante

b)

Agua destilada

c)

Solución salina

d)

Plasma humano

54.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba en tubo de coagulasa?

a)

El plasma permanece líquido.

b)

Se forma un pequeño coágulo organizado.

c)

No hay aglutinación visible.

d)

La suspensión bacteriana permanece lechosa.

55.

¿Por qué es más definitiva la prueba en tubo que la prueba en portaobjetos?

a)

Porque utiliza más plasma.

b)

Porque algunas cepas de S. aureus no producen el factor de aglutinación.

c)

Porque se realiza a una temperatura más alta.

d)

Porque requiere menos tiempo de incubación.

56.

¿Cuál es el principio de la prueba de DNasa?

a)

Detecta la producción de la exoenzima desoxirribonucleasa.

b)

Detecta la presencia de lipasas.

c)

Detecta la producción de coagulasa.

d)

Detecta la presencia de catalasa.

57.

¿Qué método utiliza ácido clorhídrico para visualizar la prueba de DNasa?

a)

Precipitación con Ácido Clorhídrico (HCl)

b)

Azul de Toluidina O

c)

Método de Gram

d)

Método de Ziehl-Neelsen

58.

¿Qué colorante se utiliza en el método de Azul de Toluidina para la prueba de DNasa?

a)

Azul de Toluidina O

b)

Rojo de Metilo

c)

Verde de Malaquita

d)

Cristal Violeta

59.

¿Cuál es un resultado positivo en el método de HCl para la prueba de DNasa?

a)

Se forma un halo claro alrededor del inóculo.

b)

El agar permanece opaco.

c)

Aparece una zona de color azul.

d)

El medio se vuelve amarillo.

60.

¿Qué microorganismo se puede confirmar con la prueba de DNasa?

a)

Staphylococcus aureus

b)

Escherichia coli

c)

Bacillus subtilis

d)

Pseudomonas aeruginosa

61.

¿Cuál es el principio de la prueba de movilidad?

a)

Determinar la presencia de lípidos

b)

Identificar bacterias móviles

c)

Medir la temperatura de incubación

d)

Evaluar la opacidad del medio

62.

¿Qué tipo de medio se utiliza en la prueba de movilidad?

a)

Medio sólido estándar

b)

Medio líquido

c)

Medio de agar semisólido

d)

Medio de gelatina

63.

¿Cuál es un resultado positivo en la prueba de movilidad?

a)

Crecimiento limitado a la línea de punción

b)

Crecimiento difuso y turbio

c)

Medio permanece opaco

d)

No hay crecimiento

64.

¿Qué temperatura de incubación se recomienda para la prueba de movilidad?

a)

20-25°C

b)

25-30°C

c)

35-37°C

d)

40-45°C

65.

¿Cuál es la función principal de los medios multitest en microbiología?

a)

Aumentar la temperatura de incubación

b)

Reducir el tiempo y espacio en el laboratorio

c)

Incrementar la cantidad de muestras

d)

Mejorar la calidad del aire en el laboratorio

66.

¿Qué azúcares están presentes en el Agar Triple Azúcar Hierro (TSI)?

a)

Glucosa y maltosa

b)

Glucosa y lactosa

c)

Sacarosa y maltosa

d)

Lactosa y fructosa

67.

¿Qué indicador de pH se utiliza en el Agar Hierro de Kligler (KIA)?

a)

Azul de bromotimol

b)

Rojo de fenol

c)

Verde de bromocresol

d)

Amarillo de metilo

68.

¿Cuál es el propósito del tiosulfato de sodio en el medio TSI?

a)

Actuar como fuente de carbono

b)

Proveer un ambiente anaeróbico

c)

Servir como fuente de azufre

d)

Neutralizar el pH

69.

¿Qué indica una superficie roja y fondo amarillo en la interpretación de resultados de KIA?

a)

Fermentación de lactosa

b)

Fermentación de glucosa

c)

Producción de H2S

d)

No fermentación de azúcares

70.

¿Qué significa la presencia de un precipitado negro en el medio KIA?

a)

Fermentación de lactosa

b)

Producción de gas

c)

Producción de H2S

d)

No fermentación de azúcares

71.

¿Cuál es el propósito principal del medio Agar Lisina Hierro (LIA)?

a)

Detectar la fermentación de glucosa

b)

Determinar la capacidad de desaminación de lisina

c)

Medir la producción de gas

d)

Identificar la presencia de peptonas

72.

¿Qué reacción se observa en LIA cuando hay una superficie púrpura y fondo púrpura?

a)

Fermentación de glucosa

b)

Producción de gas

c)

Descarboxilación de lisina

d)

Producción de H2S

73.

¿Qué indica una superficie alcalina/fondo ácido (K/A) en el medio de cultivo?

a)

Superficie púrpura/fondo amarillo

b)

Superficie roja/fondo amarillo

c)

Precipitado negro

d)

Anillo rojo después de añadir el reactivo de Kovacs

74.

¿Qué reacción es característica de los géneros Proteus, Providencia y Morganella?

a)

Desaminación de lisina positiva

b)

Descarboxilación de lisina negativa

c)

Producción de H2S

d)

Formación de indol

75.

¿Qué componente del medio SIM permite la producción de sulfuro de hidrógeno (H2S)?

a)

Tiosulfato de sodio y sal de hierro

b)

Peptona de caseína

c)

Reactivo de Kovacs

d)

Agar

76.

¿Qué indica un precipitado negro en el medio de cultivo?

a)

Producción de H2S

b)

Formación de indol

c)

Desaminación de lisina

d)

Fermentación de glucosa

77.

¿Qué resultado se observa en el medio SIM si hay movilidad positiva?

a)

Crecimiento difuso o turbidez

b)

Anillo rojo

c)

Precipitado negro

d)

Superficie púrpura

78.

¿Cuál es el principio de la leche tornasolada como medio diferencial?

a)

Proporciona un ambiente ácido para el crecimiento bacteriano.

b)

Actúa como indicador de pH y de oxidación-reducción.

c)

Sirve para la fermentación de azúcares complejos.

d)

Se utiliza para la producción de gas en bacterias.

79.

¿Qué reacción se observa cuando la leche tornasolada se vuelve rosa?

a)

Reacción alcalina.

b)

Reducción del tornasol.

c)

Reacción ácida.

d)

Formación de gas.

80.

¿Qué sucede durante la peptonización en la leche tornasolada?

a)

Se forma un coágulo sólido.

b)

Se produce un líquido translúcido y pardusco.

c)

Se eleva el pH del medio.

d)

Se observan burbujas en la cuajada.

81.

¿Qué indica la formación de gas en la leche tornasolada?

a)

La digestión de la caseína.

b)

La producción de ácido láctico.

c)

La producción de gas por fermentación.

d)

La reducción del tornasol.

82.

¿Cuál es el principio de la prueba de susceptibilidad a la bacitracina?

a)

Identificación de estreptococos β-hemolíticos del Grupo A

b)

Diferenciación de estreptococos α-hemolíticos

c)

Identificación de bacterias gram-negativas

d)

Prueba de resistencia a antibióticos en general

83.

¿Qué medio y reactivo se utiliza en la prueba de susceptibilidad a la bacitracina?

a)

Placa de Agar Sangre y disco de optoquina

b)

Placa de Agar Sangre y disco de bacitracina

c)

Placa de Agar MacConkey y disco de bacitracina

d)

Placa de Agar Chocolate y disco de optoquina

84.

¿Cómo se interpreta un resultado susceptible en la prueba de bacitracina?

a)

Crecimiento hasta el borde del disco

b)

Zona de inhibición alrededor del disco

c)

Cambio de color en el medio

d)

Formación de burbujas en el medio

85.

¿Cuál es el propósito de la prueba de susceptibilidad a la optoquina?

a)

Diferenciación de Streptococcus pneumoniae de otros estreptococos α-hemolíticos

b)

Identificación de estreptococos β-hemolíticos del Grupo A

c)

Prueba de resistencia a la penicilina

d)

Diferenciación de bacterias gram-negativas

86.

¿Cuál es el principio de la prueba de susceptibilidad a la novobiocina?

a)

Diferenciar Staphylococcus saprophyticus de otros ECN

b)

Identificar S. pneumoniae

c)

Medir la solubilidad en bilis

d)

Confirmar resistencia a CO2

87.

¿Qué indica una zona de inhibición de 14 mm o más en la prueba de optoquina?

a)

Resistente

b)

Susceptible (Presuntivo S. pneumoniae)

c)

No concluyente

d)

Resistente a CO2

88.

¿Qué medio se utiliza en la prueba de susceptibilidad a la novobiocina?

a)

Agar MacConkey

b)

Agar Mueller-Hinton

c)

Agar Chocolate

d)

Agar Sabouraud

89.

¿Cuál es la temperatura de incubación estándar para la prueba de novobiocina?

a)

25-30°C

b)

35-37°C

c)

40-42°C

d)

20-25°C

90.

¿Qué indica una zona de inhibición de ≤12 mm en la prueba de novobiocina?

a)

Susceptible

b)

Resistente (Presuntivo S. saprophyticus)

c)

No concluyente

d)

Resistente a CO2

91.

¿Qué medio se utiliza en la prueba de difusión en disco de Kirby-Bauer?

a)

Agar MacConkey

b)

Agar Sangre

c)

Agar Mueller-Hinton

d)

Agar Chocolate

92.

¿Cuál es el propósito principal de la prueba de utilización de citrato?

a)

Determinar la resistencia a antibióticos

b)

Identificar la producción de ácido láctico

c)

Evaluar si un organismo puede usar citrato como fuente de carbono

d)

Medir la producción de gas en bacterias

93.

¿Qué efecto tiene la timidina en los medios de laboratorio estándar?

a)

Mejora la síntesis de proteínas

b)

Bloquea la síntesis de ácido fólico

c)

Aumenta la producción de ácido láctico

d)

Facilita la fermentación de glucosa

94.

¿Qué subproductos se producen durante el metabolismo del citrato?

a)

Ácido acético y dióxido de carbono

b)

Amoníaco e hidróxido de amonio

c)

Ácido láctico y etanol

d)

Metano y agua

95.

¿Cuál es el principio de la prueba del malonato?

a)

Determinar si un organismo puede utilizar el malonato de sodio como única fuente de carbono.

b)

Medir el pH del medio de cultivo.

c)

Identificar la presencia de glucosa en el medio.

d)

Evaluar la producción de gas en el medio.

96.

¿Qué indica un resultado positivo en la prueba del malonato?

a)

El color del medio cambia de verde a un azul claro o azul de Prusia intenso.

b)

El medio permanece verde.

c)

El medio se vuelve amarillo.

d)

No hay cambio de color en el medio.

97.

¿Para qué es útil la prueba del malonato?

a)

Diferenciar entre Enterobacter (positivo) y Escherichia (negativo).

b)

Medir la temperatura óptima de crecimiento.

c)

Evaluar la producción de ácido láctico.

d)

Identificar la presencia de oxígeno en el medio.

98.

¿Cuál es el principio de la prueba de reducción de nitratos?

a)

Detectar la capacidad de un organismo para realizar la respiración aeróbica utilizando oxígeno.

b)

Detectar la capacidad de un organismo para realizar la respiración anaeróbica utilizando nitrato como aceptor final de electrones.

c)

Medir la cantidad de oxígeno en un medio de cultivo.

d)

Evaluar la producción de gas nitrógeno en condiciones aeróbicas.

99.

¿Qué reactivos se utilizan en la prueba de reducción de nitratos?

a)

Reactivo A (ácido sulfanílico) y Reactivo B (α-naftilamina).

b)

Reactivo C (ácido clorhídrico) y Reactivo D (fenolftaleína).

c)

Reactivo E (ácido acético) y Reactivo F (bromotimol azul).

d)

Reactivo G (ácido nítrico) y Reactivo H (metil rojo).