wayground logo

Free Printable Worksheets

Font size

S
M
L
XL
Worksheets

Wskazania do Badań Mikrobiologicznych

Total questions: 72

Worksheet time: 55mins

Name
Class
Date
1.

Które z poniższych jest podstawowym wskazaniem do wykonania badań mikrobiologicznych u pacjenta z gorączką i leukocytozą?

a)

Ustalenie przyczyny zgonu

b)

Kliniczne objawy zakażenia

c)

Ocena nosicielstwa

d)

Badanie epidemiologiczne

2.

Który cel badań mikrobiologicznych dotyczy analizy potencjalnych źródeł transmisji w szpitalnych pomieszczeniach i na powierzchniach?

a)

Badania epidemiologiczne środowiska

b)

Ocena nosicielstwa i kolonizacji

c)

Kliniczne objawy zakażenia

d)

Ustalenie przyczyn zgonu pacjenta

3.

Jaka jest zalecana objętość pobieranych płynów ustrojowych lub ropy do badań mikrobiologicznych?

a)

5–10 ml

b)

1–2 ml

c)

3–4 ml

d)

15–20 ml

4.

Co należy zrobić, gdy nie można uzyskać nawet niewielkiej objętości wydzieliny i materiał ma małą liczbę drobnoustrojów?

a)

Pobrać trzy wymazy bez podłoża

b)

Pobrać jeden wymaz i zamrozić

c)

Zastąpić wymaz pobraniem krwi

d)

Pobrać dwa wymazy z podłożem

5.

Które stwierdzenie prawidłowo opisuje cel pobrania dwóch wymazówek przy małej liczbie drobnoustrojów?

a)

Jedna do antybiogramu, druga do archiwum

b)

Jedna do preparatu, druga do posiewu

c)

Obie do szybkiego testu antygenowego

d)

Obie do transportu jałowego

6.

Który materiał należy przetwarzać natychmiast, ponieważ nie nadaje się do dłuższego przechowywania?

a)

Bioptat w formalinie

b)

Surowica zamrożona w -20°C

c)

Wymazy na zwykłych wacikach

d)

Treść ropnia w podłożu transportowym

7.

Dlaczego materiał z dolnych dróg oddechowych nie powinien być przechowywany długo?

a)

Wymaga suszenia przed analizą

b)

Szybko ulega nadkażeniu florą

c)

Jest chemicznie stabilny tygodniami

d)

Nie zawiera drobnoustrojów żywych

8.

Jaki jest najlepszy mocz?

a)

z nocy

b)

po 4-6 godzinach od ostatniego wypróżnienia

c)

z lodówki pana od biochemii

9.

Która opcja najlepiej oddaje wspólną cechę wymienionych materiałów: wymazy na wacikach, dolne drogi oddechowe, mocz w jałowym pojemniku, kał, fragmenty drenów?

a)

Wysokie ryzyko zmian jakości podczas przechowywania

b)

Wymagają chemicznego utrwalania zawsze

c)

Bezpieczne do długotrwałego mrożenia

d)

Niska wartość diagnostyczna w ogóle

10.

Jaką czynność należy wykonać tuż przed rozpoczęciem pobierania moczu?

a)

Umyć ręce wodą i mydłem

b)

Zdezynfekować dłonie alkoholem

c)

Założyć nienoszone rękawiczki

d)

Posmarować skórę kremem ochronnym

11.

Które stwierdzenie opisuje prawidłowe przygotowanie okolicy krocza i narządów moczowo‑płciowych?

a)

Umyć bieżącą wodą i mydłem, a następnie wytrzeć sterylnymi ręcznikami

b)

Przetrzeć chusteczką antybakteryjną

c)

Umyć bieżącą wodą i mydłem

d)

Nic nie trzeba robić

12.

Jakie dodatkowe zalecenie dotyczy mężczyzn przed pobraniem moczu?

a)

Odciągnąć napletek i umyć żołądź

b)

Założyć jałowy opatrunek na żołądź

c)

Nie oddawać moczu przez 12 godzin

d)

Użyć środka antyseptycznego na żołądź

13.

Która technika pobrania minimalizuje zanieczyszczenie próbki moczu?

a)

Z tzw. środkowego strumienia

b)

Z pierwszych kilku mililitrów

c)

Z końcowej części mikcji

d)

Z całej objętości jednorazowo

14.

Do jakiego pojemnika należy pobrać mocz do badań mikrobiologicznych?

a)

Do jałowego pojemnika z pokrywą

b)

Do wielorazowego kubka plastikowego

c)

Do czystego szklanego słoika

d)

Do metalowego pojemnika bez wieka

15.

Które działanie najczęściej prowadzi do kontaminacji próbki podczas pobierania?

a)

Pobranie po wysiłku fizycznym

b)

Wypicie kawy przed badaniem

c)

Oddawanie moczu w pozycji stojącej

d)

Dotykanie wnętrza pojemnika palcami

16.

Jakie akcesorium stosuje się do pobierania moczu u niemowląt po uprzednim umyciu okolicy krocza?

a)

Bawełniane pieluszki chłonne

b)

Sterylne strzykawki bez igły

c)

Jałowe podklejane woreczki

d)

Niejałowe plastikowe kubki

17.

Jak można transportować próbkę moczu bez podłoża transportowo‑wzrostowego, aby zachować wiarygodność wyniku?

a)

Do 2 godzin w 15–25°C

b)

Do 4 godzin w temperaturze pokojowej

c)

Do 24 godzin w 2–8°C

d)

Do 12 godzin w 2–8°C

18.

Jaką ilość stałego kału należy pobrać do badania mikrobiologicznego?

a)

Grudkę wielkości ziarna grochu

b)

Połowę pojemnika laboratoryjnego

c)

Trzy małe grudki razem

d)

Jedną pełną łyżeczkę

19.

Jaka minimalna ilość płynnego kału jest wymagana do badania?

a)

Około 10 kropli płynu

b)

Minimum 3 ml zawiesiny

c)

Dokładnie 5 ml materiału

d)

Co najmniej 1 ml próbki

20.

Które stwierdzenie dotyczące zanieczyszczeń próbki kału jest prawidłowe?

a)

Próbka nie powinna zawierać moczu

b)

Dopuszcza się niewielką ilość moczu

c)

Próbka nie powinna zawierać krwi

d)

Próbka nie powinna zawierać śluzu

21.

W jakiej sytuacji dopuszcza się pobranie wymazu z odbytu?

a)

Zawsze przy biegunce wodnistej bez gorączki

b)

Po upływie tygodnia od pierwszych objawów

c)

Przy badaniu w kierunku Shigella–Salmonella, gdy nie uzyskano kału

d)

Gdy próbka kału zawiera odrobinę moczu

22.

Kał do badania bakteriologicznego powinien być dostarczony do laboratorium w jakim czasie i w jakiej temperaturze transportu?

a)

W ciągu 6 h, 2–8°C

b)

W ciągu 24 h, 20–22°C

c)

W ciągu 12 h, 4°C

d)

W ciągu 2 h, 15–25°C

23.

Maksymalny czas i temperatura przechowywania kału przed badaniem bakteriologicznym to:

a)

Do 72 h, -20°C

b)

Do 24 h, 4–6°C

c)

Do 6 h, 15–25°C

d)

Do 12 h, 2–8°C

24.

Materiał do badania w kierunku rotawirusów/adenowirusów należy przetransportować najpóźniej:

a)

Do 2 h od pobrania

b)

Do 24 h od pobrania

c)

Do 6 h od pobrania

d)

Do 12 h od pobrania

25.

Jeśli badanie w kierunku rotawirusów/adenowirusów nie może być wykonane natychmiast, kał można przechowywać:

a)

Do 12 h w 15–25°C

b)

Do 48 h w temperaturze pokojowej

c)

Do 72 h w 2–8°C

d)

Do 24 h w 4°C

26.

Wymaz z odbytu należy transportować w jakiej temperaturze?

a)

W temperaturze pokojowej

b)

W 2–8°C

c)

W 15–25°C z lodem

d)

W 4°C

27.

Które działanie należy wykonać przed pobraniem wymazu z gardła, aby zminimalizować zanieczyszczenie próbki?

a)

Przepłukać jamę ustną letnią, przegotowaną wodą

b)

Wypić szklankę zimnej, niegazowanej wody

c)

Zjeść lekki posiłek wysokobiałkowy

d)

Żuć gumę miętową przez kilka minut

28.

Z jakich miejsc przede wszystkim pobiera się materiał przy wymazie z gardła w infekcjach bakteryjnych?

a)

Zmiany zapalne i czopy ropne na migdałkach

b)

Powierzchnia języka i śluzówka policzka

c)

Podniebienie twarde i wargi wewnętrzne

d)

Dno jamy ustnej i dziąsła przyśrodkowe

29.

Czego należy unikać, aby nie skontaminować wymazu w trakcie pobierania?

a)

Dotykania języka, języczka, śluzówki policzka i śliny

b)

Szybkiego obrotu wymazówki w gardle

c)

Wykonania wymazu po głębokim wdechu pacjenta

d)

Użycia pojedynczej, jałowej wymazówki

30.

Pacjent przed planowym wymazem z gardła powinien być:

a)

Na czczo, bez jedzenia i picia

b)

Po lekkim posiłku węglowodanowym

c)

Nawodniony słodzoną herbatą

d)

Po płukaniu alkoholem medycznym

31.

Jaki jest główny cel pobierania wymazu z przedsionka nosa w diagnostyce mikrobiologicznej?

a)

Ocena nosicielstwa określonych bakterii

b)

Monitorowanie skuteczności antybiotykoterapii

c)

Pomiar wydzieliny iwilgotnienia błon

d)

Ocena drożności przewodów nosowych

32.

Które patogeny najczęściej są celem badania nosicielstwa przy wymazie z przedsionka nosa?

a)

Corynebacterium diphtheriae i Bordetella pertussis

b)

Pseudomonas aeruginosa i Klebsiella pneumoniae

c)

Streptococcus pyogenes i Haemophilus influenzae

d)

Staphylococcus aureus i Neisseria meningitidis

33.

Z jakiej lokalizacji należy pobrać materiał podczas wymazu z przedsionka nosa?

a)

Z zatok szczękowych przez punkcję

b)

Z tylnej ściany gardła i migdałków

c)

Z jamy ustnej pod językiem

d)

Z błon śluzowych kanałów nosowych

34.

Jak należy przygotować wymazówkę przed pobraniem materiału z przedsionka nosa?

a)

Podgrzać końcówkę do temperatury ciała

b)

Zanurzyć w alkoholu izopropylowym 70%

c)

Posmarować żelem z lidokainą 2%

d)

Zwilżyć jałowym roztworem soli fizjologicznej

35.

Która praktyka dotycząca liczby wymazówek jest prawidłowa podczas pobierania wymazu z przedsionka nosa?

a)

Użyć trzech wymazówek na każdy kanał

b)

Użyć jednej wymazówki dla obu dziurek

c)

Użyć wymazówki wspólnej z gardła

d)

Użyć osobnej wymazówki dla każdej dziurki

36.

Kiedy najlepiej pobrać próbkę plwociny od pacjenta?

a)

Wieczorem po kolacji

b)

Po obiedzie w spoczynku

c)

Rano przed posiłkiem

d)

W nocy po przebudzeniu

37.

Jakie przygotowanie jamy ustnej jest wymagane przed odkrztuszeniem plwociny?

a)

Brak jakiegokolwiek płukania

b)

Szczotkowanie z pastą wybielającą

c)

Przepłukanie letnią wodą

d)

Płukanie roztworem chlorheksydyny

38.

Minimalna objętość plwociny potrzebna do badania wynosi:

a)

Co najmniej 1 ml

b)

Dokładnie 5 ml

c)

Około 0,1 ml

d)

Ponad 10 ml

39.

Do jakiego naczynia należy odkrztusić materiał?

a)

Jałowej probówki wąskootworowej

b)

Pojemnika wielokrotnego użytku

c)

Zwykłej szklanki kuchennej

d)

Jałowego pojemnika z szerokim otworem

40.

Które działanie pomaga w trudności z odkrztuszaniem na 1–2 dni przed pobraniem?

a)

Ograniczenie płynów do minimum

b)

Podanie antybiotyku profilaktycznego

c)

Całkowity zakaz kaszlu

d)

Zastosowanie środków wykrztuśnych

41.

Jaki roztwór można użyć do nebulizacji w dniu pobrania plwociny?

a)

Sterylna woda destylowana

b)

Stężony roztwór nadtlenku

c)

0,9% roztwór glukozy

d)

3–10% roztwór soli fizjologicznej

42.

Który środek może być składnikiem nebulizacji wspomagającej pobranie plwociny?

a)

Glikol propylenowy

b)

Etanol 70%

c)

Kwas cytrynowy 10%

d)

Jodyna 2%

43.

Jaką metodę fizykoterapii można zastosować dla ułatwienia odkrztuszenia?

a)

Chłodzenie lodem pleców

b)

Elektrostymulacja mięśni twarzy

c)

Masaż kończyn dolnych

d)

Oklepywanie klatki piersiowej

44.

Który opis najlepiej definiuje aspirat tchawiczy w diagnostyce mikrobiologicznej?

a)

Materiał uzyskany z wymazu z nosogardła

b)

Materiał uzyskany z drzewa oskrzelowego przez cewnik

c)

Materiał uzyskany z popłuczyn z jamy opłucnej

d)

Materiał uzyskany z jamy ustnej po płukaniu solą

45.

Materiał określany jako BAL odnosi się do:

a)

Płyn opłucnowy pobrany przez torakocentezę

b)

Płyn mózgowo rdzeniowy po nakłuciu lędźwiowym

c)

Popłuczyny z jamy nosowej po irygacji

d)

Popłuczyny oskrzelowo pęcherzykowe z bronchoskopii

46.

PBS w kontekście materiału z dolnych dróg oddechowych to:

a)

Wymaz z oskrzela z biopsji szczoteczkowej

b)

Próbka surowicy pobrana do badania serologicznego

c)

Płyn buforowany fosforanowy do transportu krwi

d)

Wymaz z gardła pobrany zwykłym wymazówką

47.

W jakiej temperaturze należy transportować wszystkie materiały z dolnych dróg oddechowych?

a)

Powyżej 30 stopni Celsjusza

b)

W stałej temperaturze 5 stopni Celsjusza

c)

W zakresie 0–4 stopni Celsjusza

d)

W zakresie 15–25 stopni Celsjusza

48.

Gdy ilość ropy jest skąpa, materiał należy:

a)

pobrać na wymazówkę

b)

odessać do dużej strzykawki

c)

rozcieńczyć solą fizjologiczną

d)

wycisnąć na jałową gazę

49.

Po aspiracji ropy materiał można przesłać:

a)

w strzykawce z jałowym zabezpieczeniem

b)

w probówce bez korka

c)

na szalce Petriego otwartej

d)

w papierowym jałowym rękawie

50.

Jaka jest zalecana temperatura i czas transportu ropy po aspiracji?

a)

2–8°C, do 24 godzin od pobrania

b)

37°C, do 1 godziny od pobrania

c)

poniżej 10°C, do 6 godzin od pobrania

d)

15–25°C, do 2 godzin od pobrania

51.

Jaki preparat jest zalecany do dezynfekcji skóry przed pobraniem krwi na posiew?

a)

Woda utleniona, natychmiastowe wkłucie

b)

Chlorek sodu 0,9%, bez czasu ekspozycji

c)

Roztwór soli fizjologicznej, wytarty gazikiem

d)

Roztwór na bazie alkoholu, pozostawiony do wyschnięcia

52.

Co stosujesz jako alternatywę, gdy nie można użyć preparatu alkoholowego do dezynfekcji skóry?

a)

Wodny PVP-jod, odczekać do wyschnięcia

b)

Benzydamina, po ogrzaniu

c)

Octenidyna, bez czasu kontaktu

d)

Gliceryna, szybkie wkłucie

53.

Skąd należy pobrać krew do posiewu, aby ograniczyć zanieczyszczenie?

a)

Z żyły, zawsze z nowego wkłucia

b)

Z palca, po nakłuciu lancetem

c)

Z tętnicy, zawsze strzykawką z HIV

d)

Z tętnicy promieniowej, z tej samej igły

54.

Do jakiego pojemnika wprowadzasz pobraną krew na posiew?

a)

Do pojemnika jałowego bez podłoża

b)

Do sterylnej butelki z podłożem transportowym

c)

Do strzykawki z heparyną do biochemii

d)

Do probówki EDTA do morfologii

55.

Jak przygotować butelkę przed pobraniem krwi, aby zoptymalizować wzrost drobnoustrojów?

a)

Wstrząsnąć energicznie przez minutę

b)

Ogrzać do ciepłoty ciała przed napełnieniem

c)

Dodać 1 ml alkoholu etylowego

d)

Schłodzić w lodówce do 4 stopni

56.

Które podłoże jest przeznaczone głównie dla bakterii tlenowych?

a)

Aerobes

b)

Aerobes Plus

c)

Anaerobes

d)

PEDS

57.

Które podłoże jest wskazane, gdy we krwi pacjenta obecne są antybiotyki i podejrzewa się bakterie tlenowe?

a)

Aerobes Plus (PRO)

b)

Aerobes Plus (FAN),

c)

Anaerobes,

d)

PEDS, neutralizuje antybiotyki

58.

Co należy zrobić tuż przed wprowadzeniem krwi do butelki z podłożem?

a)

Wstrząsnąć butelką przez 30 sekund

b)

Dodać antybiotyk do butelki

c)

Przekłuć korek bez dezynfekcji

d)

Zdezynfekować korek preparatem alkoholowym

59.

Dlaczego po pobraniu krwi zaleca się zmianę igły przed nakłuciem korka butelki?

a)

Aby obniżyć temperaturę próbki

b)

Aby zwiększyć objętość pobranej krwi

c)

Aby przyspieszyć koagulację krwi

d)

Aby zmniejszyć ryzyko zanieczyszczenia próbki

60.

Jaka objętość krwi powinna być pobrana do jednej butelki hodowlanej u dorosłych i dzieci o masie ciała powyżej 36,3 kg, w zależności od podłoża?

a)

1–3 ml na butelkę hodowlaną

b)

5–7 lub 8–10 ml na butelkę

c)

0,5–1 ml na butelkę hodowlaną

d)

10–15 ml na butelkę hodowlaną

61.

Jaka objętość krwi jest zalecana w pozostałych przypadkach (niższa masa ciała lub inne sytuacje)?

a)

1–3 ml na butelkę

b)

4–6 ml na butelkę

c)

5–7 ml na butelkę

d)

8–10 ml na butelkę

62.

Ile butelek hodowlanych należy zaszczepić z jednego wkłucia żyły obwodowej?

a)

Jedną butelkę tlenową

b)

Dwie butelki tlenowe

c)

Dwie butelki: tlenowa i beztlenowa

d)

Trzy butelki: dwie tlenowe i jedna beztlenowa

63.

Z ilu oddzielnych wkłuć do żył obwodowych standardowo pobiera się krew na posiew?

a)

Z pięciu wkłuć w sepsie

b)

Z czterech wkłuć rutynowo

c)

Z dwóch wkłuć (czasem z trzech)

d)

Z jednego wkłucia

64.

Kiedy najlepiej pobrać krew na posiew względem gorączki?

a)

Po całkowitym ustąpieniu gorączki

b)

0,5–1 godziny przed szczytem gorączki

c)

Dowolnie w ciągu dnia

d)

W szczycie gorączki dokładnie

65.

Jeśli trudno przewidzieć czas szczytu gorączki, jak postąpić z pobraniami?

a)

Odstawić pobranie do dnia następnego

b)

Pobrać trzy próbki z tego samego wkłucia

c)

Pobrać jedną próbkę z jednego wkłucia

d)

Pobrać dwie próbki z różnych wkłuć w odstępie godzinnym

66.

Jaki jest zalecany czas dostarczenia próbki krwi do laboratorium od momentu pobrania?

a)

Natychmiast po pobraniu

b)

W ciągu 12 godzin

c)

W ciągu 6–8 godzin

d)

W ciągu 2–4 godzin

67.

Minimalna objętość płynu mózgowo‑rdzeniowego, którą należy pobrać do jałowej probówki z zachowaniem pełnej aseptyki, wynosi:

a)

Co najmniej 1 ml

b)

Dokładnie 0,5 ml

c)

Przynajmniej 3 ml

d)

Minimum 5 ml

68.

Które stwierdzenie najlepiej opisuje wymóg aseptyki podczas pobierania płynu mózgowo‑rdzeniowego?

a)

Sterylność sprzętu nie jest konieczna

b)

Panie, nie za to mnie płaco

c)

Tylko dezynfekcja skóry bez sterylności

d)

Pełna aseptyka przez cały zabieg

69.

Jak rozdzielić pobrany płyn mózgowo‑rdzeniowy na potrzeby badań?

a)

Wyłącznie 3 ml do posiewu bez biochemii

b)

Około 2 ml do oceny biochemicznej, 1–3 ml do podłoża pediatrycznego

c)

Całość do oceny biochemicznej bez posiewu

d)

Tylko 1 ml do podłoża, resztę wyrzucić

70.

Jaki jest docelowy czas i temperatura transportu płynu mózgowo‑rdzeniowego?

a)

Do 2 godzin w 4°C

b)

Do 2 godzin w 37°C

c)

Natychmiast w temperaturze pokojowej

d)

Do 4 godzin w 20°C

71.

Która opcja prawidłowo określa maksymalny dopuszczalny czas transportu płynu mózgowo-rdzeniowego, gdy nie można dostarczyć próbki w czasie docelowym?

a)

Do 12 godzin

b)

Do 8 godzin

c)

Do 4 godzin

d)

Do 24 godzin

72.

Dlaczego stosuje się podłoże pediatryczne dla części płynu mózgowo‑rdzeniowego?

a)

Aby zwiększyć objętość próbki

b)

Do posiewu krwi i płynów ustrojowych

c)

Wyłącznie do badania cytologicznego

d)

Do konserwacji próbki bez posiewu

Similar Resources on Wayground

Antihipertensivos

68 questions

Antihipertensivos

quiz

Worksheet

•

University

Nursing Assessment and Patient Interviewing

70 questions

Nursing Assessment and Patient Interviewing

quiz

Worksheet

•

University

Chapter 10: Bony Thorax-Sternum and Ribs Test Bank

67 questions

Chapter 10: Bony Thorax-Sternum and Ribs Test Bank

quiz

Worksheet

•

University

ATI Ch 12-14: Acute Neurologic Disorders

71 questions

ATI Ch 12-14: Acute Neurologic Disorders

quiz

Worksheet

•

University

Cardiology Worksheet

70 questions

Cardiology Worksheet

quiz

Worksheet

•

University

Morfofisiología de la sangre I

67 questions

Morfofisiología de la sangre I

quiz

Worksheet

•

University

NERVOUS SYSTEM ⏐ 𝙼𝙲 𝟷

75 questions

NERVOUS SYSTEM ⏐ 𝙼𝙲 𝟷

quiz

Worksheet

•

University

Fisioterapia

68 questions

Fisioterapia

quiz

Worksheet

•

University